RESUMEN

Se evaluó la frecuencia de infección por Trypanosoma spp. en murciélagos capturados en ecótopos silvestres y urbanos del Departamento del Atlántico, en la región Caribe de Colombia, entre marzo de 2021 y mayo de 2022. Se identificaron taxonómicamente los murciélagos y se determinó sexo, edad relativa y condiciones reproductivas. Se utilizó una muestra de sangre para análisis parasitológico y extracción de ADN para la amplificar una región del ARNr 18S. Se capturaron 125 murciélagos, siendo las familias más abundantes Molossidae (62/125; 49,6%) y Phyllostomidae (43/125; 34,4%). Molossus molossus capturado en ecótopos silvestres mostró una frecuencia de infección del 8,1% (5/61) y 4,1% (3/61) mediante análisis parasitológico y molecular, respectivamente. En comparación, Noctilio albiventris capturado en ecótopos urbanos mostró una frecuencia de infección del 16,6% (2/12) para ambos análisis. Estos hallazgos representan los primeros registros de M. molossus albergando Trypanosoma spp. para el Departamento del Atlántico y de N. albiventris albergando Trypanosoma spp. en Colombia.

Palabras clave:
Colombia; Murciélagos; Trypanosoma; Zoonosis

MENSAJE CLAVE

Motivación para realizar el estudio. El rol de los murciélagos como hospederos de Trypanosoma spp. en el Departamento del Atlántico en Colombia, así como su diversidad taxonómica ha sido poco estudiada.

Principales hallazgos. Este es el primer reporte de frecuencia de infección por Trypanosoma spp. en murciélagos en el Departamento del Atlántico en Colombia.

Implicancias. La gran capacidad de adaptación de los murciélagos a diferentes nichos ecológicos y su rol como hospederos de Trypanosoma spp. en ecótopos silvestres y urbanos representa un factor de riesgo en ciclos de transmisión de importancia epidemiológica.

Palabras clave:
Colombia; Murciélagos; Trypanosoma; Zoonosis

INTRODUCCIÓN

Los murciélagos son hospederos y reservorios de varios microorganismos parásitos ¹1. Jaimes-Dueñez J, Cantillo-Barraza O, Triana-Chavez O, Mejia-Jaramillo AM. Molecular surveillance reveals bats from eastern Colombia infected with Trypanosoma theileri and Trypanosoma wauwau-like parasites. Prev Vet Med. 2020;184:1-6. doi: 10.1016/j.prevetmed.2020.105159.
https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2020... . Su capacidad para volar, longevidad, movilidad y servicios ecosistémicos como dispersores de semillas, polinizadores y controladores de artrópodos sitúan a los murciélagos en el foco de la vigilancia ecoepidemiológica de algunas zoonosis ²2. Jansen AM, Xavier SCDC, Roque ALR. Trypanosoma cruzi transmission in the wild and its most important reservoir hosts in Brazil. Parasit Vectors. 2018;11(1):1-25. doi: 10.1186/s13071-018-3067-2.
https://doi.org/10.1186/s13071-018-3067-... . Algunos agentes etiológicos de estas zoonosis, como los tripanosomátidos, entre ellos Trypanosoma y Leishmania (Euglenozoa: Kinetoplastea, Trypanosomatidae), son importantes en medicina veterinaria y humana ¹1. Jaimes-Dueñez J, Cantillo-Barraza O, Triana-Chavez O, Mejia-Jaramillo AM. Molecular surveillance reveals bats from eastern Colombia infected with Trypanosoma theileri and Trypanosoma wauwau-like parasites. Prev Vet Med. 2020;184:1-6. doi: 10.1016/j.prevetmed.2020.105159.
https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2020... ^,33. Amórtegui-Hernández DM. (2022) Evaluación de la diversidad de parásitos del orden Trypanosomatida que infectan murciélagos en diferentes ecorregiones de Colombia [tesis maestría]. Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad de los Andes (Bogotá D.C., Colombia); 2022. Disponible en: http://hdl.handle.net/1992/59458.
http://hdl.handle.net/1992/59458... .

Trypanosoma (Schizotrypanum) cruzi, es el agente causal de la Tripanosomiasis Americana o enfermedad de Chagas, y afecta a los colombianos siendo reportados 34 casos para el año 2023 ⁴4. Instituto Nacional de Salud-INS. Boletín Epidemiológico Semanal. Semana 50 (del 10 al 16 de diciembre) [Internet]. Instituto Nacional de Salud; 2023 [consultado el 28 de diciembre de 2023]. Disponible en: https://www.ins.gov.co/buscador-eventos/BoletinEpidemiologico/2023_Bolet%C3%ADn_epidemiologico_semana_50.pdf.
https://www.ins.gov.co/buscador-eventos/... . La transición de la enzootia estricta a la zooantroponosis, condicionada por la fauna presente en cada ecótopo, se reflejan en los ciclos de transmisión de T. cruzi y otros tripanosomátidos. En algunas regiones, el mantenimiento del aporte sanguíneo a los vectores a través de diferentes mamíferos podría modular la virulencia de los parásitos y su prevalencia ⁵5. de Fuentes-Vicente JA, Gutiérrez-Cabrera AE, Flores-Villegas AL, Lowenberger C, Benelli G. What makes an effective Chagas disease vector? Factors underlying Trypanosoma cruzi-triatomine interactions. Acta Trop. 2018;183:23-31. doi: 10.1016/j.actatropica.2018.04.008.
https://doi.org/10.1016/j.actatropica.20... .

Los estudios sobre murciélagos como hospederos de Trypanosoma en Colombia se remontan a 1982, cuando Marinkelle ⁶6. Marinkelle CJ. Prevalence of Trypanosoma cruzi-like infection of Colombia bats. Ann Trop Med Parasitol. 1982;76:125-134. doi: 10.1080/00034983.1982.11687517.
https://doi.org/10.1080/00034983.1982.11... reportó 233 hemocultivos positivos para T. cruzi, 25 para T. cruzi marinkellei y 315 para Schizotrypanum spp. La mayor prevalencia se encontró en las regiones central, oriental y sur de Colombia. Aunque los estudios incluyeron murciélagos de la región Caribe, no se reportó la frecuencia de infección por Trypanosoma. Por lo tanto, el objetivo de este estudio fue evaluar la frecuencia de infección por Trypanosoma spp. en murciélagos silvestres y urbanos del Departamento del Atlántico en Colombia, para conocer su posible rol en los ciclos epidemiológicos las Triponosomiasis.

EL ESTUDIO

Área de estudio

El área de muestreo consistió en cuatro puntos de colecta, dos en ecótopos urbanos delimitados como punto 1U (11º01’02” N-74º52’30” O) y punto 2U (11º01’00” N-74º52’28” O), dentro de 895,6 hectáreas de Bosque Seco Tropical (BsT) en el Campus de la Universidad del Atlántico en el Municipio de Puerto Colombia (elevación promedio: 21 metros), con una temperatura promedio entre 28°-32° C y una precipitación anual de 819 mm³, y dos en ecótopos silvestres delimitados como punto 1W (10º47’54” N - 75º00’35” O) y punto 2W (10º47’53” N - 75º00’34” O) conformados dentro de 1425,2 hectáreas de bosque seco tropical BsT en el Corregimiento de Chorrera (Municipio de Juan de Acosta) (elevación promedio: 70 metros), temperatura promedio entre 27° a 32° C y precipitación anual de 1655 mm³, todos del Departamento del Atlántico, norte de Colombia ⁽⁷7. Instituto Von Humboldt. Actualización del mapa nacional Bosque seco tropical a escala de 1: 100.000. Atlántico-Colombia [Internet]; 2022 [consultado el 15 de junio de 2022]. Disponible en: https://www.humboldt.org.co/en/research/projects/developing-projects/item/158-bosques-secos-tropicales-en-colombia.
https://www.humboldt.org.co/en/research/... (Figura 1).

Captura, identificación, y marcaje de murciélagos

Se utilizaron dos redes de niebla de 12 x 2,5 m y un tamaño de malla de 3 x 3 cm (BioWed®) para capturar murciélagos entre marzo de 2021 y mayo de 2022. Se realizaron tres sesiones de muestreo en dos noches consecutivas (entre las 17:30 y 23:30 horas) en zonas silvestres y urbanas, sumando seis sesiones de muestreo (12 noches) ⁸8. Bracamonte JC. Protocolo de muestreo para la estimación de la diversidad de murciélagos con redes de niebla en estudios de ecología. Ecol Austral. 2018;28(1):446-454. doi: 10.25260/EA.18.28.2.0.272.
https://doi.org/10.25260/EA.18.28.2.0.27... . El esfuerzo total fue de 4320 m² por hora, con un esfuerzo por noche de 180 horas por red.

La identificación taxonómica de los ejemplares se realizó con las claves de Díaz et al.⁹9. Díaz MM, Solari S, Gregorin R, Aguirre LF, Barquez RM. Claves de identificación de los murciélagos Neotropicales: Chave de Identificação dos Morcegos Neotropicais. Tucumán: Argentina; 2021 Ed. PCMA: 10-132., así como la determinación del sexo, edad y condiciones reproductivas se ajustaron a Kunz et al.¹⁰10. Kunz TH, Wemmer C, Hayssen V. Sex, age and reproductive condition of mammals. Wilson DE, Cole R, Nichols J, Rudran R, Foster M (eds.). In: Measuring and monitoring biological diversity: standard methods for mammals. Washington: Smithsonian Institution Press; 1996: 279-290.. Se realizaron microperforaciones en el patagio del ala izquierda para registrar las recapturas. Otro volumen de sangre se destinó al análisis parasitológico. Los datos morfométricos de cada animal se registraron en una ficha informativa de elaboración propia.

Diagnóstico parasitológico y molecular

Se extrajo sangre estéril (50 µL) de la vena braquial. Para el posterior análisis molecular, la sangre se impregnó con papel de filtro Whatman y se almacenó a 4 °C. Cada muestra de sangre fresca se examinó dos veces con un microscopio óptico (Leica Microsystems CMS GmbH, modelo DMi1, Morrisville, NC, EE. UU.) a 40X para buscar hemoflagelados, morfológicamente compatibles con el Trypanosoma, y su posible cuantificación ⁽¹¹11. Añez N, Crisante G, Soriano PJ. Trypanosoma cruzi congenital transmission in wild. Acta Trop. 2009; 109(1):78-80. doi: 10.1016/j.actatropica.2008.08.009.
https://doi.org/10.1016/j.actatropica.20... .

La extracción del ADN de las muestras de sangre impregnada en papel de filtro se realizó con el kit de purificación Wizard® HMW (Promega Corporation: Madison, WI, EE.UU.), siguiendo las instrucciones del fabricante. La concentración del ADN total se cuantificó utilizando un EPOCH 2NS (BioTeck Instruments, Inc: EE.UU.), y el diagnóstico molecular se realizó mediante amplificación por Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) anidada de una región comprendida entre las posiciones 200 y 600 de la fracción 18S del ARNr, para determinar la presencia de Trypanosoma spp, utilizando los cebadores TRY-927 Forward (5’GAAACAAGAAACACGGAG3’) y TRY-927 Reverse (5’CTACTGGGCAGCTTGGA3’), que en los casos positivos generaron un fragmento de aproximadamente 900 pb ¹²12. Noyes HA, Stevens JR, Teixeira M, Phelan J, Holz P. A nested PCR for the ssrRNA gene detects Trypanosoma binneyi in the platypus and Trypanosoma sp. in wombats and kangaroos in Australia. Int J Parasitol. 1999;29(1):331-339. doi: 10.1016/s0020-7519(98)00167-2.
https://doi.org/10.1016/s0020-7519(98)00... . Posteriormente, se tomaron 5 µL del producto de amplificación y se realizó una segunda etapa de PCR, utilizando los cebadores SSU-561 Forward (5’TGGGATAACAAAGGAGCA3’) y SSU-561 Reverse (5’CTGAGACTGTAACCTCAAAGC3’) que amplificaron un fragmento entre 320 y 560 pb ¹²12. Noyes HA, Stevens JR, Teixeira M, Phelan J, Holz P. A nested PCR for the ssrRNA gene detects Trypanosoma binneyi in the platypus and Trypanosoma sp. in wombats and kangaroos in Australia. Int J Parasitol. 1999;29(1):331-339. doi: 10.1016/s0020-7519(98)00167-2.
https://doi.org/10.1016/s0020-7519(98)00... . Se utilizó una mezcla de PCR sin ADN como control negativo de la reacción, y ADN de T. cruzi (cepa MDID/CO/2018/Dm006) como control positivo.

La mezcla de PCR se realizó con un volumen final de 25 µL, de los cuales 5 µL correspondieron al ADN molde y los 20 µL restantes a 10 µL de GoTaq® Green Master Mix, 2X (Promega), 3 µL de MgCl₂, 2 µL de cada uno de los cebadores implementados para cada etapa y 5 μL de agua libre de nucleasas (Promega®). La PCR se llevó a cabo en el termociclador TC-9639 (Benchmark SCIENTIFIC: Sayreville, NJ, EE.UU.) siguiendo las condiciones de Noyes et al.¹²12. Noyes HA, Stevens JR, Teixeira M, Phelan J, Holz P. A nested PCR for the ssrRNA gene detects Trypanosoma binneyi in the platypus and Trypanosoma sp. in wombats and kangaroos in Australia. Int J Parasitol. 1999;29(1):331-339. doi: 10.1016/s0020-7519(98)00167-2.
https://doi.org/10.1016/s0020-7519(98)00... . Los productos obtenidos se evidenciaron mediante electroforesis horizontal (100V/30 minutos) en gel de agarosa al 1,5%, teñido con solución de bromuro de etidio en tampón TAE, durante 12 minutos, para ser visualizados y fotodocumentados en el sistema de imagen iBright™ FL1500 (Thermo Fisher Scientific Inc: MA, EE.UU.). Las muestras se consideraron positivas cuando se amplificó una banda entre 320-560 pb ¹²12. Noyes HA, Stevens JR, Teixeira M, Phelan J, Holz P. A nested PCR for the ssrRNA gene detects Trypanosoma binneyi in the platypus and Trypanosoma sp. in wombats and kangaroos in Australia. Int J Parasitol. 1999;29(1):331-339. doi: 10.1016/s0020-7519(98)00167-2.
https://doi.org/10.1016/s0020-7519(98)00... , utilizando como referencia el marcador de tamaño molecular de 100-1.000 pb (MBiotech).

Análisis de datos

La frecuencia de infección se estimó en porcentajes y el análisis comparativo de la diversidad del número de especies de murciélagos por localidad (q0/riqueza de especies; q1/especie típica y q2/especie dominante) se realizó a partir de los datos de abundancia según Hill ¹³13. Hill MO. Diversity and evenness: a unifying notation and its consequences. Ecol. 1973;54(2):427-432. doi: 10.2307/1934352.. Para este análisis, se realizaron curvas de rarefacción de especies (números de Hill) utilizando el paquete “iNext” del lenguaje R ¹⁴14. Hsieh TC, Ma KH, Chao A. iNEXT: an R package for rarefaction and extrapolation of species diversity (Hill numbers). Methods Ecol Evol. 2016;7(12):1451-1456. doi: 10.1111/2041-210X.12613.
https://doi.org/10.1111/2041-210X.12613.... .

Se realizó una prueba de permutación en el programa PAST-4 para buscar diferencias significativas entre la diversidad de orden q0, q1 y q2 de los murciélagos capturados en localidad silvestre y urbana. Una prueba de Fisher permitió determinar la asociación entre la presencia de Trypanosoma spp. en los murciélagos y los ecótopos y una prueba de chi-cuadrado permitió determinar las diferencias estadísticas entre la frecuencia de infección en las especies de murciélagos/ecótopos colectados.

Aspectos éticos

El estudio fue aprobado por el Comité de Ética de la Universidad del Atlántico, Puerto Colombia, Colombia, con el código 02-III-2021.

HALLAZGOS

Riqueza, abundancia y características morfológicas de los murciélagos

Se capturaron 125 murciélagos, pertenecientes a cuatro familias y ocho especies, que se distribuyeron en cuatro gremios tróficos ¹⁵15. Gardner AL. Mammals of South America, Volume 1. Marsupials, Xenarthrans, Shrews, and Bats. The University of Chicago Press, Chicago and London; 2007.. Las familias más abundantes fueron Molossidae (62/125; 49,6%) y Phyllostomidae (43/125; 34,4%), seguidas de Noctilionidae (18/125; 14,4%) y Vespertilionidae (2/125; 1,6%). Dentro de las características morfológicas externas generales de los murciélagos estudiados, los individuos de Molossus molossus (Figura 2A) presentan un pelaje bicolor de 4 mm de longitud, que comienza con una base clara y pasa a un marrón rojizo. Además, el pelo de la base de la cadera mide 7,3 mm. Estos murciélagos tienen un peso aproximado de 18,8 g, una longitud media del antebrazo de 40,1 mm y una envergadura alar de 288,1 mm ¹⁵15. Gardner AL. Mammals of South America, Volume 1. Marsupials, Xenarthrans, Shrews, and Bats. The University of Chicago Press, Chicago and London; 2007.. Además, los individuos de Noctilio albiventris (Figura 2B) presentan un pelaje corto de color amarillo rojizo, pesan 26,7 g y tienen una longitud de antebrazo de 59,3 mm y una envergadura de 421,6 mm ¹⁵15. Gardner AL. Mammals of South America, Volume 1. Marsupials, Xenarthrans, Shrews, and Bats. The University of Chicago Press, Chicago and London; 2007..

Las especies por área, gremio trófico, sexo, edad relativa y condiciones reproductivas a las que pertenecen se complementaron en la Tabla 1. Los índices de diversidad alfa (números de Hill) revelaron una riqueza de especies (q0) para ambas áreas, con el área silvestre presentando una riqueza significativamente mayor que el área urbana (p=0,010), aunque la curva de rarefacción para el área silvestre no es estable. Los valores de q1 (riqueza de especies) para ambas zonas revelaron abundancias similares, pero sin diferencias significativas (p=0,080), y ambas curvas de rarefacción tienden a estabilizarse, tendencia que se repite para los valores de q2 (especie típica), donde se observó una dominancia de los murciélagos silvestres con respecto al urbano, pero sin diferencias significativas (p=0,080) (Figura 3).

Frecuencia de infección por Trypanosoma spp. en murciélagos

De los 125 murciélagos capturados, siete hembras preñadas fueron excluidas (dos del ecótopo silvestre y cinco del urbano), el 94,4% (118/125) de los murciélagos fueron analizados. En cuanto al diagnóstico molecular, se obtuvo que el 4,2% (5/118) de las muestras amplificaron una banda de 560 bp (Figura 4). En detalle, M. molossus del ecótopo silvestre se encontró positivo con 2,5% (3/118), mientras que en el ecótopo urbano se encontró a N. albiventris con 1,6% (2/118).

La frecuencia de infección por Trypanosoma spp. de acuerdo con los análisis parasitológicos para los murciélagos capturados en ecótopos silvestres fue del 5,8% (5/86) y para los ecótopos urbanos fue del 6,2% (2/32). Las especies de murciélagos con presencia de tripomastigotes sanguíneos fueron M. molossus (para ecótopos silvestres) y N. albiventris (para ecotó pos urbanos).

El diagnóstico parasitológico de M. molossus fue del 8,1% (5/61), con respecto al molecular (4,9%, 3/61). N. albiventris presentó la misma frecuencia de infección por diagnóstico parasitológico y molecular (16,6%, 2/12).

No se encontró asociación entre la presencia de Trypanosoma spp. en murciélagos y en los ecótopos (Fischer; p=1,000), así como no hay diferencias significativas entre la frecuencia de infección por estos parásitos en murciélagos de áreas silvestres (2,5%) y los de áreas urbanas (1,6%) (p= 0,929).

DISCUSIÓN

Pocos estudios han abordado la biodiversidad de la fauna de murciélagos del Departamento del Atlántico en la región Caribe de Colombia, y este es el primero en contribuir a la actualización del inventario de murciélagos que habitan en ensamblajes de ecótopos silvestres y urbanos con remanentes de Bst, incluyendo también una primera aproximación de la presencia de Trypanosoma spp. en estos mamíferos. El presente estudio abarcó el 57,1% de las familias reportadas en el Departamento del Atlántico ¹⁶16. Avendaño-Maldonado LJ, Camargo-Alarcón MA, Borja-Acuña R, Chacón-Pacheco J. Mamíferos del Departamento del Atlántico, Colombia. Biota Colombiana. 2021; 22(2):108-126. doi: 10.21068/c2021.v22n02a06.
https://doi.org/10.21068/c2021.v22n02a06... y el 44,4% de las registradas en el Neotrópico ⁽¹⁷17. Oliveira da Silva AC. Infecção por tripanossomatídeos em quirópteros capturados no município de Natal-RN [tesis de maestría]. Centro de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal, 2021. Disponible en: https://repositorio.ufrn.br/handle/123456789/32416.
https://repositorio.ufrn.br/handle/12345... .

En cuanto a la estructura comunitaria con mayor esfuerzo de muestreo (q0), se pudieron conocer más especies en el ensamblaje de la zona silvestre, que presentaba una mayor diversidad de murciélagos con respecto a la zona urbana. Las curvas de rarefacción más estables para las áreas silvestres y urbanas (q1) reflejan un buen esfuerzo de captura que proporciona una contribución aceptable al inventario de especies basado en abundancias. Aunque el área urbana tiene una menor riqueza de murciélagos, este ensamblaje tiene una mejor uniformidad (q2), aunque no hay diferencias significativas entre las áreas.

El rol de M. molossus como hospedero de tripanosomátidos ha sido reportado en Venezuela por Añez et al.¹¹11. Añez N, Crisante G, Soriano PJ. Trypanosoma cruzi congenital transmission in wild. Acta Trop. 2009; 109(1):78-80. doi: 10.1016/j.actatropica.2008.08.009.
https://doi.org/10.1016/j.actatropica.20... , con evidencia de transmisión congénita de T. cruzi, y en Brasil por Oliveira da Silva ¹⁷17. Oliveira da Silva AC. Infecção por tripanossomatídeos em quirópteros capturados no município de Natal-RN [tesis de maestría]. Centro de Biociências, Universidade Federal do Rio Grande do Norte, Natal, 2021. Disponible en: https://repositorio.ufrn.br/handle/123456789/32416.
https://repositorio.ufrn.br/handle/12345... con 54,0% de frecuencia de infección (7/13) para T. cruzi y 69,0% (9/13) para Leishmania spp. En Colombia, se ha estudiado el papel de M. molossus como hospedero de tripanosomátidos en el Departamento de Vichada, con una frecuencia de infección del 83,3% (10/12) para T. cruzi¹1. Jaimes-Dueñez J, Cantillo-Barraza O, Triana-Chavez O, Mejia-Jaramillo AM. Molecular surveillance reveals bats from eastern Colombia infected with Trypanosoma theileri and Trypanosoma wauwau-like parasites. Prev Vet Med. 2020;184:1-6. doi: 10.1016/j.prevetmed.2020.105159.
https://doi.org/10.1016/j.prevetmed.2020... , y en el Departamento de Casanare, con el primer reporte de L. amazonensis en esta especie, sin datos sobre la frecuencia de infección ³3. Amórtegui-Hernández DM. (2022) Evaluación de la diversidad de parásitos del orden Trypanosomatida que infectan murciélagos en diferentes ecorregiones de Colombia [tesis maestría]. Facultad de Ciencias Biológicas, Universidad de los Andes (Bogotá D.C., Colombia); 2022. Disponible en: http://hdl.handle.net/1992/59458.
http://hdl.handle.net/1992/59458... ; a su vez, el mismo autor analizó muestras de sangre de seis murciélagos del Departamento del Atlántico, sin especificar la especie, pero observando la ausencia de infecciones por tripanosomátidos. Así, el presente estudio sería el primer reporte de la especie M. molossus como hospedero de Trypanosoma spp. en el Departamento del Atlántico en Colombia.

La presencia de T. cruzi-TcBat, en N. albiventris de Brasil fue reportada por Lima et al.¹⁸18. Lima L, Espinosa-Álvarez O, Ortiz P, Trejo-Varón JA, Carranza JC, Pinto CM, et al. Genetic diversity of Trypanosoma cruzi in bats, and multilocus phylogenetic and phylogeographical analyses supporting Tcbat as an independent DTU (Discrete Typing Unit). Acta Trop. 2015;151(1):166-177. doi: 10.1016/j.actatropica.2015.07.015.
https://doi.org/10.1016/j.actatropica.20... . Marinkelle ⁶6. Marinkelle CJ. Prevalence of Trypanosoma cruzi-like infection of Colombia bats. Ann Trop Med Parasitol. 1982;76:125-134. doi: 10.1080/00034983.1982.11687517.
https://doi.org/10.1080/00034983.1982.11... reportó infección por Schizotrypanum sp. en N. labialis, sinónimo de N. leporinus por técnicas parasitológicas (50,0%, 157/315); este sinónimo fue establecido como especie por Solari et al.¹⁹19. Solari S, Muñoz-Saba Y, Rodríguez-Mahecha JV, Defler TR, Ramírez-Chaves HE, Trujillo F. Riqueza, endemismo y conservación de los mamíferos de Colombia. Mastozool neotrop [Internet] 2013;20(2):301-365. Disponible en: http://www.scielo.org.ar/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0327-93832013000200008&lng=es&nrm=iso.
http://www.scielo.org.ar/scielo.php?scri... . Los presentes resultados corresponderían al primer registro de N. albiventris como hospedero de Trypanosoma spp. en Colombia. No fue posible obtener las especies de Trypanosoma circundantes por secuenciación genómica en el presente estudio debido a la limitación de recursos.

En conclusión, los resultados sugieren que la presencia de murciélagos infectados con Trypanosoma spp. (observando tripomastigotes sanguíneos) representa un riesgo potencial, ya que pueden entrar en contacto con vectores biológicos, con la posibilidad de causar zoonosis. Serán necesarios estudios futuros para identificar las especies de Trypanosoma en los murciélagos y su rol en el escenario epidemiológico como reservorio de tripanosomátidos. Este estudio contribuye al fortalecimiento de los inventarios de la fauna de murciélagos en los municipios del Departamento del Atlántico en la región Caribe de Colombia.

Referencias bibliográficas

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