RESUMEN

Objetivos.

Analizar curvas de melting para el diagnóstico de tuberculosis multidrogorresistente a partir de muestras de esputo.

Materiales y métodos.

Se colectaron muestras de esputo (n = 250) de pacientes con sospecha clínica de tuberculosis pulmonar según resultado de baciloscopia y cultivados en medio sólido Lowenstein Jensen. Según el método de referencia se trabajó con 124 muestras sensibles a rifampicina e isoniacida, 24 resistentes a rifampicina, 33 resistentes a isoniacida y 69 multidrogorresistentes. Se evaluó por PCR en tiempo real y luego por las curvas de melting, se utilizó el gen rpoB como biomarcador de resistencia a rifampicina, y el gen katG y región promotora inhA como biomarcadores de resistencia a isoniacida. La cepa H37Rv fue considerada como control sensible a drogas. Se compararon los resultados del método de referencia y los resultados del análisis de curvas de melting para evaluar los parámetros de sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo y valor predictivo negativo.

Resultados.

La resistencia a rifampicina mostró una sensibilidad de 90,3 %, especificidad de 90,4 %, valor predictivo positivo de 84,8 % y valor predictivo negativo de 94,0 %. La resistencia a isoniacida mostró una sensibilidad de 90,2 %, especificidad de 93,9 %, valor predictivo positivo de 91,1 % y valor predictivo negativo de 93,3 %. La detección de tuberculosis multidrogorresistente mostró valores de 89,9 %, 90,6 %, 78,5 % y 95,9 % para sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo y valor predictivo negativo, respectivamente.

Conclusiones.

El análisis de curvas de melting mostró ser seguro y confiable para ser utilizado en el diagnóstico rápido de tuberculosis multidrogorresistente en muestras de esputo.

Palabras clave:
Tuberculosis multidrogoresistente; Reacción en Cadena en Tiempo Real de la Polimerasa; Análisis mutacional de ADN; Mycobacterium; Polimorfismo de un solo nucleótido

ABSTRACT

Objectives.

To analyze melting curves for the diagnosis of multidrug-resistant tuberculosis from sputum samples.

Materials and Methods.

Sputum samples (n = 250) were collected from patients with clinical suspicion of pulmonary tuberculosis as a result of bacilloscopy and cultured in solid medium Lowenstein Jensen. According to the reference method, 124 samples sensitive to rifampicin and isoniazid, 24 resistant to rifampicin, 33 resistant to isoniazid, and 69 multidrug-resistant were used. It was evaluated by real-time PCR and then by melting curves, the rpoB gene was used as a biomarker of rifampicin resistance, and the katG gene and inhA promoter region were used as biomarkers of isoniazid resistance. The H37Rv strain was considered a drug-sensitive control. The results of the reference method and the results of the melting curve analysis were compared to evaluate the parameters of sensitivity, specificity, positive predictive value and negative predictive value.

Results.

Rifampicin resistance showed a sensitivity of 90.3%, specificity of 90.4%, positive predictive value of 84.8% and negative predictive value of 94.0%. Isoniazid resistance showed a sensitivity of 90.2%, specificity of 93.9%, positive predictive value of 91.1% and negative predictive value of 93.3%. The detection of multidrug-resistant tuberculosis showed values of 89.9%, 90.6%, 78.5% and 95.9% for sensitivity, specificity, positive predictive value and negative predictive value, respectively.

Conclusions.

The melting curve analysis showed to be safe and reliable to be used in the rapid diagnosis of multidrug-resistant tuberculosis in sputum samples.

Keywords:
Multidrug-resistant tuberculosis; Real-time polymerase chain reaction; Mutational DNA analysis; Mycobacterium; Single nucleotide polymorphism

INTRODUCCIÓN

Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), en el 2015 se han reportado 10,4 millones de casos nuevos de tuberculosis (TB) en todo el mundo. De estos, 480 000 fueron casos nuevos de tuberculosis multidrogorresistente (TB- MDR) y adicionalmente 100 000 casos fueron resistentes solamente a rifampicina (RIF) ¹1. Zumla A, George A, Sharma V, Herbert RHN, Baroness Masham of Ilton, Oxley A, Oliver M. The WHO 2014 global tuberculosis report-further to go. Lancet Glob Health. 2015;3(1):e10-2. doi: 10.1016/S2214-109X(14)70361-4.
https://doi.org/10.1016/S2214-109X(14)70... . En Perú, la alta incidencia de TB y el incremento de cepas de TB-MDR es uno de los mayores problemas en salud pública. La incidencia acumulada de TB fue de 119 casos por 100 000 habitantes, de los cuales 2000 fueron casos nuevos de TB-MDR y TB resistente a RIF ²2. World Health Organization. Global Tu- berculosis Report 2014 [Internet]. Gene- va: WHO; 2014. Disponible en: http://apps.who.int/medicinedocs/documents/s21634en/s21634en.pdf. Lima concentra el 80 % de casos de TB- MDR y el 90 % de casos de tuberculosis extremadamente resistente (TB-XDR); esto debido a la superpoblación de los distritos y al hacinamiento de los centros penitenciarios ³3. Zarate E, Lobón I, Saavedra C, Castañeda M. Tuberculosis en nuevos escenarios: establecimientos penitenciarios. An Fac Med. 2005;66(2):148-58..

La región Callao es uno de los lugares con mayor carga de TB, en el 2015 su incidencia acumulada fue de 218 casos por 100 000 habitantes; diagnosticándose 2204 nuevos casos de TB ³3. Zarate E, Lobón I, Saavedra C, Castañeda M. Tuberculosis en nuevos escenarios: establecimientos penitenciarios. An Fac Med. 2005;66(2):148-58.^,44. Alarcón V, Alarcón E, Figueroa C, Men- doza-Ticona A. Tuberculosis en el Perú: situación epidemiológica, avances y de- safíos para su control. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2017;34(2):299-310. doi: 10.17843/rpmesp.2017.342.2384.
https://doi.org/10.17843/rpmesp.2017.342... . Por otro lado, el transporte público también contribuye, como factor de riesgo, a la diseminación de la TB debido a la cantidad excesiva de usuarios que utilizan este tipo de transporte ⁵5. Horna-Campos O, Bedoya-Lama A, Romero-Sandoval N, Martin-Mateo M. Risk of tuberculosis in public transport sector workers, Lima, Peru. Int J Tuberc Lung Dis. 2010;14(6):714-9..

Existen dos factores principales por los cuales una micobacteria adquiere resistencia a drogas: 1) debido a la adquisición de mutaciones y 2) la activación de bombas de eflujo, característica propia de Mycobacterium tuberculosis (MTB), a diferencia de otras bacterias que adquieren resistencia a través de plásmidos o transposones ⁶6. Vilchèze C, Jacobs WR. Resistance to iso- niazid and ethionamide in Mycobacterium tuberculosis: genes, mutations, and causali- ties. Microbiol Spectr. 2014;2(4):MGM2- 0014-2013. doi: 10.1128/microbiolspec.MGM2-0014-2013.
https://doi.org/10.1128/microbiolspec.MG... . La TB-MDR se define como la resistencia a las dos drogas principales usadas en el tratamiento de la enfermedad: RIF e isoniacida (INH); mientras que la TB-XDR está definida como la resistencia a RIF, INH, a cualquier fluoroquinolona y al menos a uno de los tres antituberculosos inyectables de segunda línea. Es necesaria la detección temprana de la enfermedad para disminuir el contagio hacia otras personas. Asimismo, la quimioprofilaxis con INH disminuye el riesgo de desarrollo de la enfermedad en los contactos intradomiciliarios ⁷7. Caminero Luna JA. ¿Es la quimioprofilaxis una buena estrategia para el control de la tuberculosis? Med Clin (Barc) 2001;116: 223-doi: 10.1016/S0025-7753(01)71777-0.
https://doi.org/10.1016/S0025-7753(01)71... .

En la actualidad, la baciloscopía de esputo es la manera más rápida y menos costosa para detectar al MTB. El método se emplea para diagnosticar TB en individuos con presunta enfermedad pulmonar que acuden a los centros de salud con cuadros de tos por más de 15 días. También se utiliza para monitorear el progreso de los pacientes contagiosos durante la quimioterapia, incluida la confirmación de la curación ⁸8. Frieden T. Tuberculosis: detección de casos, tratamiento y vigilancia: preguntas y respuestas [Internet]. Kurt Toman. 2ed. Washington,D.C.:OPS;2006.Disponible en: http://iris.paho.org/xmlui/bitstream/handle/123456789/742/9275316171.pdf ?sequence=1
http://iris.paho.org/xmlui/bitstream/han... .

La RIF es un antibiótico que inhibe la enzima ARN polimerasa de la micobacteria. La resistencia a esta droga está localizada en una región de 81 pares de bases (pb) del gen rpoB. Los codones más frecuentes en esta región corresponden a las posiciones 516, 526 y 531. Cualquier cambio que origine una mutación en estas posiciones está relacionado con resistencia a la droga ⁹9. Comas I, Borrell S, Roetzer A, Rose G, Malla B, Kato-Maeda M, et al. Whole-ge- nome sequencing of rifampicin-resistant Mycobacterium tuberculosis strains identifies compensatory mutations in RNA poly- merase genes. Nat Genet. 2011;44(1):106- 10. doi: 10.1038/ng.1038.
https://doi.org/10.1038/ng.1038... .

La INH es una prodroga que es activada por la enzima katG (catalasa-peroxidasa) y actúa inhibiendo la síntesis de ácido micólico. La resistencia a INH está asociada a un cambio puntual de nucleótido en el codón 315 del gen katG. En la región promotora inhA, los cambios en las posiciones -8, -15 y -24 están relacionados a resistencia. Otros genes menos frecuentes tales como: ahpC, kasA y ndh pueden presentar regiones de mutación relacionadas a INH. Tanto el gen katG como la región promotora inhA son las más usadas en el diagnóstico de TB-MDR ¹⁰10. Somoskovi A, Parsons LM, Salfinger The molecular basis of resistance to isoniazid, rifampin, and pyrazinamide in Mycobacterium tuberculosis. Respir Res. 2001;2(3):164-8..

El conocimiento a nivel molecular de las regiones de resistencia ha facilitado la introducción de métodos rápidos para el diagnóstico de TB-MDR. Actualmente, se puede determinar, en horas, si un paciente presenta TB sensible o resistente gracias a las bondades que brindan algunos kits comerciales tales como INNOLiPA Rif TB, GenXpert y Genotype MTBDRplus (11-13). Asimismo, metodologías basadas en sondas Fret, molecular beacons y sondas TaqMan son de gran ayuda en el diagnóstico de TB pulmonar y extrapulmonar ¹⁴14. Mansour A, Tammam S, Althani A, Azzazy HM. A single tube system for the detection of Mycobacterium tuberculosis DNA using gold nanoparticles based FRET assay. J Microbiol Methods. 2017;139:165-167. doi: 10.1016/j.mimet.2017.06.001.
https://doi.org/10.1016/j.mimet.2017.06....

15. Piatek AS, Tyagi S, Pol AC, Telenti A, Mill- er LP, Kramer FR, et al. Molecular beacon sequence analysis for detecting drug resis- tance in Mycobacterium tuberculosis. Nat Biotechnol. 1998;16(4):359-63.^-1616. Savelkoul PH, Catsburg A, Mulder S, Oostendorp L, Schirm J, Wilke H, et al. Detection of Mycobacterium tubercu- losis complex with real time PCR: com- parison of different primer-probe sets based on the IS6110 element. J Microbiol Methods. 2006;66(1):177-80.. Además, estas metodologías son menos costosas que el agar proporciones en placa (APP), el cual es el método de referencia. La desventaja del APP es que demora, en promedio, 28 días para aislar la micobacteria y dos meses más para conocer la susceptibilidad a drogas ¹⁷17. Solari L, Gutiérrez A, Suárez C, Jave O, Castillo E, Yale G, et al. Análisis de costos de los métodos rápidos para diagnóstico de tuberculosis multidrogorresistente en diferentes grupos epidemiológicos del Perú. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2011;28(3):426-31..

El análisis de curvas de melting (High Resolution Melting) (HRM) es un procedimiento posterior al PCR en tiempo real; donde, con ayuda de un fluoróforo y un rango de temperatura, se pueden discriminar curvas wild type de curvas de mutación relacionadas con la resistencia a una droga específica (18,19). Los primeros trabajos con análisis de curvas de melting se realizaron en la identificación de mutaciones en K-ras para detección de cáncer colorrectal ²⁰20. Krypuy M, Newnham GM, Thomas DM, Conron M, Dobrovic A. High resolution melting analysis for the rapid and sensitive detection of mutations in clinical samples: KRAS codon 12 and 13 mutations in non-small cell lung cancer. BMC Cancer. 2006;6(1):295..

La ventaja de utilizar el análisis de curvas de melting en la detección y genotipificación de patógenos frente a métodos convencionales de aislamiento y susceptibilidad a drogas que demandan un tiempo considerable justifica la realización del presente estudio. Por tal razón, el objetivo fue analizar las curvas de melting para la detección de TB- MDR a partir de muestras de esputo.

MENSAJES CLAVE

Motivación para realizar el estudio. Los métodos convencionales para aislamiento y susceptibilidad a drogas demandan un tiempo considerable, es por ello que se planteó el análisis de curvas de melting para la detección de tuberculosis multidrogorresistente (TB-MDR) a partir de muestras de esputo.

Principales hallazgos. El análisis de curvas de melting mostró valores de sensibilidad y especificidad por encima del 90 % para diagnóstico de TB-MDR.

Implicancias. Estos resultados muestran que el análisis de curvas de melting podría ser utilizado como una prueba adicional de tamizaje para el diagnóstico de la tuberculosis; además por ser de bajo costo, fácil interpretación, y requerir menos tiempo para el diagnóstico.

MATERIALES Y MÉTODOS

DISEÑO DEL ESTUDIO

Se realizó un estudio observacional descriptivo a partir de muestras de esputo proporcionados por el Biobanco del Laboratorio de Micobacterias de la Dirección Regional de Salud (DIRESA) de la región Callao en Perú.

MUESTRAS CLÍNICAS Y EXTRACCIÓN DE ADN

Un total de 250 muestras de esputo previamente descontaminados fueron seleccionados para el estudio. El criterio de selección fue en base al frotis positivo con diagnóstico de baciloscopía (BK): paucibacilar, 1+, 2+ y 3+. Se consideró frotis paucibacilar cuando las micobacterias estuvieron presentes en número de 1-9 por campo en 100 campos observados. Para BK 1+ se consideró micobacterias presentes en número de 10-99 por campo en 100 campos observados. Para BK2+ se consideró micobacterias presentes en número de 1-10 por campo en 50 campos observados. En el caso de BK 3+ se consideró micobacterias presentes en número >10 por campo en 20 campos observados. El número de muestras de esputo según BK fueron: 21, 72, 76 y 81 respectivamente. El diagnóstico de monorresistencia o multidrogorresistencia mediante el método de referencia se detalla en la Tabla 1. Previo a la extracción de ADN, se realizó un tratamiento con lisozima a las muestras de esputo por dos horas a 56 °C. La extracción de ADN se realizó utilizando el kit PureLink® Genomic DNA(Invitrogen) basado en columnas de sílice. La cuantificación se realizó en el equipo Nanodrop 8000 (Thermo Scientific). Las concentraciones de ADN obtenidas estuvieron entre los rangos de 1-10 ng/µl. Posteriormente, el ADN genómico se almacenó a -20 ºC hasta su posterior uso. Los procedimientos de extracción y cuantificación de ADN se realizaron en los ambientes del Laboratorio de Referencia Nacional de Biotecnología y Biología Molecular del Instituto Nacional de Salud de Perú.

SUSCEPTIBILIDAD A DROGAS ANTITUBERCULOSAS

A partir de aislamientos de las micobacterias en medio sólido Lowenstein Jensen, se realizó la siembra en caldo Middlebrook 7H9 y se incubaron a 37 °C por siete días. Luego del crecimiento bacteriano, se prepararon diluciones (10-1a 10-4) en solución salina-Tween 80 y se sembraron en placas con medio Middlebrook 7H10, incubándose a 37 °C por 21 días. Se usaron las concentraciones de 0,2 µg/mL y 1,0 µg/mL para INH y 1,0 µg/mL para RIF. Las lecturas de las placas se realizaron con el conteo de colonias en la placa control (H37Rv) frente a las placas conteniendo las drogas. Para la interpretación del resultado se consideraron las proporciones críticas, si la proporción crítica fue mayor a 1 %, se informó como resistente; y si fue menor al 1 %, se informó como sensible a una droga específica.

DISEÑO DE PRIMERS Y ANÁLISIS HRM PARA DETECCIÓN DE TB-MDR EN MUESTRAS DE ESPUTO

En la Tabla 2, se indican los primers empleados para la identificación de mutaciones en RIF e INH. Estos primers fueron sintetizados por el proveedor Life Technologies (Brasil) a una concentración de 200 nM. Todas las muestras fueron analizadas por duplicado. Cada reacción de PCR incluyó el kit comercial: Master Mix 1X HRM (enzima Hot Star Taq Plus DNA polimerasa, HRM PCR buffer con dye Eva Green, solución Q y dNTPs) de la marca Qiagen, 0,7 uM de cada primer, 2 ul (1 ng/ul) de ADN de MTB y agua libre de RNasa. El PCR en tiempo real se realizó en el equipo Rotogene Q (Qiagen) bajo las siguientes condiciones: desnaturalización a 95 °C por 10 minutos, 40 ciclos de 95 °C por 1 minuto, 55 °C por 30 segundos, 72 °C por 1 minuto y una extensión final a 72 °C por 7 minutos. El análisis de HRM se realizó entre los intervalos de temperatura de 55 °C a 85 °C con incrementos de 0,02 °C. Se usó el ADN de la cepa H37Rv como referencia y se analizó las curvas de melting, posterior al PCR en tiempo real, para identificar las regiones de mutación relacionadas a la resistencia a RIF e INH en los genes rpoB, katG y región promotora inhA, respectivamente. Las muestras de esputo con un perfil de curva de diferenciación similar a H37Rv fueron considerados sensible a la droga especifica. Por el contrario, las muestras de esputo con perfil de curva de diferenciación distinto a H37Rv fueron considerados resistentes a la droga especifica.

ANÁLISIS ESTADÍSTICO

Los resultados fueron analizados con el programa SPSS versión 21.0. Se evaluaron los parámetros de sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo (VPP) y valor predictivo negativo (VPN) del análisis de curvas de melting en comparación con el APP, considerado el método de referencia. Se elaboró una tabla tetracórica con los resultados y se calcularon los parámetros antes mencionados considerando los resultados de baciloscopía y la capacidad para detección de TB-MDR.

ASPECTOS ÉTICOS

El estudio fue revisado y aprobado por el Comité de Ética en Investigación del Instituto Nacional de Salud de Perú.

RESULTADOS

ANÁLISIS DE CURVAS DE MELTING PARA DETECCIÓN DE RESISTENCIA A RIFAMPICINA EN MUESTRAS DE ESPUTO

De las 250 muestras de esputo y con perfil fenotípico conocido, el análisis de curvas de melting identificó 151 curvas de diferenciación que coincidieron con perfil sensible de la cepa ATCC H37Rv y 99 curvas de diferenciación que fueron claramente diferentes del patrón sensible H37Rv y fueron clasificados como resistentes a RIF. En comparación con el método de referencia, el análisis de curvas de melting identificó seis perfiles más como resistentes a RIF. Las curvas de diferenciación, según resultados de baciloscopía, con los perfiles sensible (círculos negros) y resistente (círculos rojos) se observan en la Figura 1. Considerando al gen rpoB como marcador de resistencia a RIF, se encontró que la sensibilidad, especificidad, VPP y VPN fueron de 90,3 %, 90,4 %, 84,8 % y 94,0 %, respectivamente (Tabla 4).

ANÁLISIS DE CURVAS DE MELTING PARA DETECCIÓN DE RESISTENCIA A ISONIACIDA EN MUESTRAS DE ESPUTO

De las 250 muestras de esputo y con perfil fenotípico conocido, el análisis de curvas de melting identificó 149 curvas de diferenciación que coincidieron con perfil sensible de la cepa ATCC H37Rv y 101 curvas de diferenciación que fueron claramente diferentes del patrón sensible H37Rv y fueron clasificados como resistentes a INH. En comparación con el método de referencia, el análisis de curvas de melting identificó un perfil menos como resistentes a ambas drogas (Tabla 3). Considerando a los genes rpoB, katG y la región promotora inhA, se encontró que la sensibilidad, especificidad, VPP y VPN fueron 89,9 %, 90,6 %, 78,5 % y 95,9 % respectivamente (Tabla 4). Estos parámetros estadísticos se incrementan cuando se toma en cuenta el puntaje de BK. Los valores más bajos se observan en BK paucibacilares y más altos en BK 3+ (Tabla 5).

DISCUSIÓN

El presente estudio permitió identificar TB-MDR basado en el análisis de curvas de melting que discrimina aislamientos de MTB sensibles y resistentes a drogas. Los resultados de los parámetros analizados fueron variables según el gen relacionado a la resistencia de una droga específica. Los valores de sensibilidad y especificidad fueron mayores al 90 % cuando se analiza como gen independiente.Asimismo, se observó que los resultados de BK tienen una relación directa con los valores de sensibilidad, especificidad, VPP y VPN. Los valores de sensibilidad y especificidad son mayores en muestras con BK 3+ en comparación a las muestras paucibacilares, BK 1+ y BK 2+. La detección de TB-MDR se realizó en base en los genes rpoB, katG y la región promotora inhA. Los valores obtenidos en el análisis curvas de melting fueron adecuados y podrían ser considerados como prueba de tamizaje en el diagnóstico de TB-MDR.

En Perú, desde el 2010 se viene usando métodos moleculares basados en el uso del kit comercial Genotype MTBDRplus que combina un PCR convencional multiplex y una posterior hibridación reversa en tira de nitrocelulosa que hacen que la metodología sea compleja y aplicable a muestras de esputo con baciloscopía mínima (1+) según recomendaciones del fabricante. Es necesario mencionar que el método molecular tiene un costo aproximado de 176 PER (53,65 USD), considerado alto, en comparación con otros métodos ¹⁷17. Solari L, Gutiérrez A, Suárez C, Jave O, Castillo E, Yale G, et al. Análisis de costos de los métodos rápidos para diagnóstico de tuberculosis multidrogorresistente en diferentes grupos epidemiológicos del Perú. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2011;28(3):426-31.. Ante este precedente, el análisis de curvas de melting resulta ser una alternativa ideal para el diagnóstico de TB-MDR en muestras de esputo mediante un PCR en tiempo real, debido a que se puede realizar en menos de 24 horas (si se trabaja un grupo reducido de muestras); además de ser de bajo costo y de fácil interpretación.

Se han reportado diversos estudios relacionados al diagnóstico de TB-MDR mediante análisis de curvas de melting en aislamientos de MTB en comparación con el método de referencia. Galarza et al. reportaron valores de sensibilidad y especificidad mayores al 90 % para la detección de TB-MDR; además identificaron que las mutaciones más frecuentes en relación a los genes rpoB, katG y región inhA fueron S531L, S315T1 y C-15T ²¹21. Galarza M, Fasabi M, Levano KS, Cas- tillo E, Barreda N, Rodriguez M, et al. High-resolution melting analysis for mo- lecular detection of multidrug resistance tuberculosis in Peruvian isolates. BMC Infect Dis. 2016;16:260. doi: 10.1186/s12879-016-1615-y.
https://doi.org/10.1186/s12879-016-1615-... .

Sin embargo, los estudios realizados en muestras de esputo son escasos. Los resultados obtenidos en el presente estudio son similares a lo reportado por Tavakkoliamol et al. quienes analizaron 2000 muestras de esputos positivos a través de curvas de melting encontrando una sensibilidad de 98,6 % y una especificidad de 100,0 % en la detección de mutaciones puntuales ²²22. Tavakkoliamol Z, Nazemi A, Khatamne- jad MR. Study of Mutations in katG and inhA Genes by High Resolution Method in Isoniazid Resistant Mycobacterium tu- berculosis Isolates. Infect Epidemiol Med. 2016;2(1): 4-7.; y a lo reportado por Anthwal et al. quienes analizaron 124 muestras de esputo obteniendo valores de 89,0 %, 85,0 % y 100,0 % de sensibilidad en los genes rpoB, katG y región promotora inhA, respectivamente, y una especificidad de 100,0 % en todos los genes ²³23. Anthwal D, Gupta RK, Bhalla M, Bhat- nagar S, Tyagi JS, Haldar S. Direct Detec- tionofRifampinandIsoniazidResistancein SputumSamplesfromTuberculosisPatients by High-Resolution Melt Curve Analysis. J Clin Microbiol. 2017;55(6):1755-66. doi: 10.1128/JCM.02104-16.
https://doi.org/10.1128/JCM.02104-16... .

La calidad del ADN influye en la obtención de una adecuada discriminación entre curvas de diferenciación sensible y resistente a una droga específica. La purificación del ADN con kit comercial discrimina adecuadamente las curvas de melting en comparación con métodos caseros como boiling (hervido) de las muestras o purificación basado en resinas tales como chelex (datos no incluidos).

Asimismo, a partir de muestras de esputo, los métodos convencionales como los kits comerciales extraen todo el ADN presente en las muestras, es decir, extraen tanto el ADN de la micobacteria como el humano ²⁴24. Meaza A, Kebede A, Yaregal Z, Dagne Z, Moga S, Yenew B, et al. Evaluation of genotype MTBDR plus VER 2.0 line probe assay for the detection of MDR- TB in smear positive and negative sputum samples.BMCInfectDis.2017;17(1):280. doi: 10.1186/s12879-017-2389-6.
https://doi.org/10.1186/s12879-017-2389-...

25. Dorman SE, Chihota VN, Lewis JJ, van der Meulen M, Mathema B, Beylis N, et al. Genotype MTBDRplus for direct detection of Mycobacterium tuberculosis and drug resistance in strains from gold miners in South Africa. J J Clin Microbiol. 2012 Apr;50(4):1189-94. doi: 10.1128/JCM.05723-11.
https://doi.org/10.1128/JCM.05723-11...

26. Meyer AJ, Atuheire C, Worodria W, Kizito S, Katamba A, Sanyu I, et al. Sputum quality and diagnostic performance of GeneXpert MTB/RIF among smear-negative adults with presumed tuberculosis in Uganda. PLoS One. 2017;12(7):e0180572. doi:10.1371/journal.pone.0180572.
https://doi.org/10.1371/journal.pone.018... ^-2727. Walusimbi S, Bwanga F, De Costa A, Haile M, Joloba M, Hoffner S. Meta-analysis to compare the accuracy of GeneXpert, MODS and the WHO 2007 algorithm for diagnosis of smear-negative pulmonary tuberculosis. BMC Infect Dis. 2013;13:507. doi: 10.1186/1471-2334-13-507.
https://doi.org/10.1186/1471-2334-13-507... . Es necesario optimizar el aislamiento de ADN bacteriano en muestras que también contengan ADN humano. Al respecto, kits comerciales de enriquecimiento (basados en la identificación de grupos metilo), como LOOXSTER® Enrichment podrían ser usados sólo para aislar ADN bacteriano o fúngico y no ADN humano ²⁸28. Bruns T, Sachse S, Straube E, Assefa S, Herrmann A, Hagel S, et al. Identifica- tion of bacterial DNA in neutrocytic and non-neutrocytic cirrhotic ascites by meansof a multiplex polymerase chain reaction. Liver Int. 2009;29(8):1206-14. doi:10.1111/j.1478-3231.2009.02073.x.
https://doi.org/10.1111/j.1478-3231.2009... .

Una de las limitaciones del estudio fue la utilización de muestras de esputos paucibacilares con baja carga bacteriana y que en los análisis finales de diagnóstico de TB-MDR influyeron en la disminución de la sensibilidad y especificidad. A pesar de esto, los resultados de los parámetros analizados son relevantes y concordante con la literatura revisada.

En conclusión, el análisis de curvas de melting mostró valores adecuados de sensibilidad y especificidad para el diagnóstico rápido de TB-MDR a partir de muestras de esputo, siendo capaz de identificar mutaciones de resistencia a drogas basado en genes específicos. Estos resultados avalan la utilización de este método como una prueba adicional de tamizaje para el diagnóstico de la tuberculosis, además de ser de bajo costo, fácil interpretación, y requerir menos tiempo para el diagnóstico.

Agradecimientos:

Al Dr. Cesar Cabezas, exjefe del Instituto Nacional de Salud, quien durante su gestión apoyó las investigaciones relacionadas a la tuberculosis. A la Lic. Vilma Yarleque por su apoyo en la compra de reactivos necesarios para la investigación. A Harrison Montejo por su apoyo en la logística de los insumos.

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Anexo 1:   Perfil del análisis de curvas de melting para detección de tuberculosis multidrogorresistente en esputos paucibacilares en genes rpoB (rifampicina), katG y promotor inhA (isoniacida)

Las muestras con perfi l de resistencia se agrupan en círculo rojo mientras que los perfi les sensibles se agrupan en círculo negro La cepa H37Rv sirvió como muestra de referencia sensible a las drogas rifampicina e isoniacida Paucibacilar: micobacterias presentes en número de 1-9 por campo en 100 campos observados A, D y G: curvas de amplifi cación en esputos paucibacilares en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA B, E y H: curvas normalizadas en esputos paucibacilares en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA C, F e I: curvas de diferenciacion en esputos paucibacilares en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA

Anexo 2   Perfil del análisis de curvas de melting para detección de tuberculosis multidrogorresistente en esputos BK 1+ en genes rpoB (rifampicina), katG y promotor inhA (isoniacida)

Las muestras con perfil de resistencia se agrupan en círculo rojo mientras que los perfiles sensibles se agrupan en círculo negro La cepa H37Rv sirvió como muestra de referencia sensible a las drogas rifampicina e isoniacida Bk 1+: micobacterias presentes en número de 10-99 por campo en 100 campos observados A, D y G: curvas de amplificación en esputos Bk 1+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA B, E y H: curvas normalizadas en esputos Bk 1+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA C, F e I: curvas de diferenciacion en esputos Bk 1+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA

Anexo 3   Perfil del análisis de curvas de melting para detección de tuberculosis multidrogorresistente en esputos BK 2+ en genes rpoB (rifampicina), katG y promotor inhA (isoniacida)

Las muestras con perfil de resistencia se agrupan en círculo rojo mientras que los perfiles sensibles se agrupan en círculo negro La cepa H37Rv sirvió como muestra de referencia sensible a las drogas rifampicina e isoniacida Bk 2+: micobacterias presentes en número de 1-10 por campo en 50 campos observados A, D y G: curvas de amplificación en esputos Bk 2+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA B, E y H: curvas normalizadas en esputos Bk 2+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA C, F e I: curvas de diferenciacion en esputos Bk 2+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA

Anexo 4   Perfil del análisis de curvas de melting para detección de tuberculosis multidrogorresistente en esputos BK 3+ en genes rpoB (rifampicina), katG y promotor inhA (isoniacida)

Las muestras con perfil de resistencia se agrupan en círculo rojo mientras que los perfiles sensibles se agrupan en círculo negro La cepa H37Rv sirvió como muestra de referencia sensible a las drogas rifampicina e isoniacida Bk 3+: micobacterias presentes en número > 10 por campo en 20 campos observados A, D y G: curvas de amplificación en esputos Bk 3+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA B, E y H: curvas normalizadas en esputos Bk 3+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA C, F e I: curvas de diferenciacion en esputos Bk 3+ en relacion a genes rpoB, katG y región promotora inhA

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